Основной целью работы было подтверждение существенной роли свободных жирных кислот в проявлении пассивной проницаемости мембран саркоплазматического ретикулума, являющегося основным кальциевым депо в скелетных мышцах млекопитающих. Для решения этой задачи была использована способность молекул альбумина адсорбировать и освобождать свободные жирные кислоты и другие вещества при изменениях окружающей среды. Альбумин сыворотки крови человека (САЧ) в виде водных растворов полностью освобождали от адсорбированных гидрофобных веществ с помощью активированного фармацевтического древесного угля при низких значениях рН. После удаления угля центрифугированием возвращали рН раствора альбумина к нейтральному - физиологическому. Молекулы альбумина принимали нативную глобулярную форму, полностью освобожденную от адсорбированных веществ. Инкубация с «чистым» САЧ фрагментированного саркоплазматического ретикулума значительно снижала пассивную проницаемость мембран для ионов кальция.
Human serum albumin, sarcoplasmic reticulum, Сывороточный альбумин человека, саркоплазматический ретикулум, пассивная проницаемость, passive permeability
1. Alekseeva O.M., Kim Yu.A. “The influence of caffeine analogues and antagonists on the Ca2+-accumulation by sarcoplasmic reticulum at skeletal muscle” // Nova Science Publishers, New York, 2008. Ed. by G.E. Zaikov. Chapter 11, P. 120-125.
2. Vekshina O. (Alekseeva), Kim Yu., Vekshin N. “Magic” calcium gradient for the operation of the sarcoplasmic reticulum” // Book “Progress in Biochemical Physics, Kinetics and Thermodinamics” Nova Science Publishers, New York, 2008. Ed. by G.E. Zaikov. P. 141-155.
3. Ikemoto N., Yamamoto T. “The luminal Ca2+ transient controls Ca2+ release/re-uptake of sarcoplasmic reticulum // Biochem. Biophys. Res. Commun. 2000. V. 279. P.858-863
4. Ritov V.B, Budina N.B., Vekshina O.M. (Alekseeva) “The action of caffeine and Mg2+ on the efficacy of Ca2+ transport by terminal cisterns and longitudinal tubules of rabbit muscle” // Bulletin experimentalnoy biologii i medizini. 1985. V. 1. P. 53-54.
5. Alekseeva O.M., Ritov V.B. “Two forms of Ca-dependent ATPase of sarcoplasmic reticulum” // Biochimia. 1979. V. 44. P. 1582-1593.
6. Ikemoto N., Kim D.H., Antoniu B. “Measurement of calcium release in isolated membrane of sarcoplasmic reticulum” // Methods Enzymol. 1988. V. 157. P. 469-480.
7. Alekseeva O.M., Kim Yu.A., Rykov V.A., Vekshin N.L. «The Quenching of Intrinsical Fluorescence of Sarcoplasmic Reticulum for the Lipid-Protein Interrelationship Determination»”. «Handbook of Chemistry, Biochemistry and Biology: New Frontiers» Nova Science Publishers, New York, Ed.by G. E. Zaikov and A. N. Goloschapov. 2009. Chapter 15, P. 130-138.
8. Vekshin N.L. // Photonics of biopolimers. Springer. “Biological and Medical Physics Series”. 2002.
9. Ritov V.B. “Acetylcholine influence and caffeine on functional activity fragmented the sarcoplasmic reticulum” // Biochimia. 1971. V. 36. P. 393-399.
10. Folch J., Lees M., Stanley G.H.S. “A simple method for the isolation and purification of total lipids from animal tissue” // J. Biol. Chem. 1957. V.226. P. 497-509.
11. Meissner G., Flaisher S., “Characterization of sarcoplasmic reticulum from skeletal muscle”// BBA. 1971. V. 241. P. 356.
12. Sarzala M.G., Z. E. Pilarska, Drabikowski M., “Solubilization and reaggregation of SR membranes” // Protid Biol. Fluids Oxford/ 1974. P. 109-113.
13. Lau H., A. H. Caswell, J-P Brunschwig, R.J. Baerwald, M.Careia “Lipid analysis and freeze-fracture studies on isolated transverse tubules and sarcoplasmic reticulum subfractions of skeletal muscle”// J. Biol. Chem. 1979. V. 254. N. 2. P. 540-546.
14. Wagner H., Borhammer Z., Wolf P. “Dunnschichtromatographie von Phosphatiden und Glykolipiden“ // Biochem.Zeitschr., 1961. V. 334. N 2. P. 1175-184.
15. Amenta J.S. “A rapid chemical method for quantification of lipids separated by thin-layer chromatography” // J.Lipid Res. 1964. V. 5. P. 270-272.
16. Sarzala M.G., Drabikowski W. “Free fatty acids as a factor modifying properties of fragmented SR during aging” // Life Sciences. 1969. V.8.Part 2. P. 477-483.
17. Lukyanenko V, Gyo¨rke I, Wiesner TF, and Gyo¨rke S “Potentiation of Ca2+ release by cADP-ribose in the heart is mediated by enhanced SR Ca2+ uptake into the sarcoplasmic reticulum” // Circ. Res. 2001. V. 89. P. 614-622.
18. Lukyanenko V, Viatchenko-Karpinski S, Smimov A, Wiesner TF, and Gyo¨rke S “Dynamic regulation of sarcoplasmic reticulum Ca2+ content and release by luminal Ca2+-sensitive leak in rat ventricular myocytes” // Biophys J. 2001. V. 81. P. 785-798.
19. Lehmberg E., Casida J.E. “Similarity of insect and mammalian ryanodine binding sites” // Pestic Biochem Physiol. 1994. V. 48. P. 145-152.
20. Masaki T., Yasokawa N., Tohnishi M., Nishimatsu T., Tsubata K., Inoue K., Motoba K., and Hirooka T. “Flubendiamide, a Novel Ca2+ Channel Modulator, Reveals Evidence for Functional Cooperation between Ca2+ Pumps and Ca2+ Release” // Mol Pharmacol 2006. V. 69. N. 5. P. 1733-1739.
